Наши телефоны: 8-(863)-290-00-45 8-(863)-303-08-65 8-903-406-70-27 8-928-279-81-86
Ветеринарная клиника Вита г. Ростов-на-Дону

Бабезиоз (пироплазмоз) собак: новые данные по старой проблеме

Бабезиоз (пироплазмоз) собак является широко распространенным во всем мире клинически существенным, трансмиссивным гемопротозойным заболеванием. Только в Ростовской области зараженность собак бабезиозом в период с марта по июнь достигает 35% [1].

На сегодняшний день в отечественной ветеринарной литературе сложилось несколько устойчивых стереотипов относительно бабезиоза собак, вот некоторые из них: бабезиоз (пироплазмоз) легко диагностируется в острую стадию заболевания; на собаках паразитирует только один вид бабезий (пироплазм), который не поражает другие виды животных, а пироплазмы других видов животных не поражают собак; пироплазмоз передается только через укусы клещей или при переливании крови; на ранних стадиях заболевания пироплазмоз легко лечится, а не леченые собаки, как правило, погибают; для бабезиоза (пироплазмоза) нехарактерно носительство.
Конечно, у каждого специалиста есть свои мнения и догадки относительно бабезиоза, но в отсутствии полноценной молекулярной диагностики они остаются только догадками и уделом меньшинства специалистов.

Разные виды бабезий часто называют пироплазмами, что является собирательным термином для рода бабезий и тейлерий. Эти два рода за последние 10 лет подверглись скрупулезному генетическому исследованию, что привело к переклассификации и изменениям в токсономии этих паразитов. По международной классификации роды Babesiaspp. входят в семейство Babesiidae, надсемейство

Piroplasmida в пределах типа Apicomplexa, кроме того, в надсемейство Piroplasmida входит также и родTheileriidae.
В англоязычной литературе на основании величины бабезий при световой микроскопии выделяют «большой» бабезиоз (пироплазмоз) при обнаружении в мазках крови методом световой микроскопии бабезий размерами более 3-5 μm. На сегодняшний день мы знаем, что это такие бабезии (пироплазмы) как B. canis и B. vogeli. О «малом» бабезиозе говорят при обнаружении в мазках крови бабезий менее 3 μm, это такие бабезии (пироплазмы) как B. gibsoni (табл 1). Несмотря на кропотливое наблюдение в течение почти ста лет за паразитами в мазках крови, классификация бабезий не шла дальше, чем классификация их по морфологическим особенностям и размерам. Впервые предложил классифицировать возбудителей бабезиоза собак по клиническим признакам заболевания немецкий протозоолог Эдвард Рейчнов, который выявил серьезные различия в тяжести клинического течения и патогенности возбудителей, вызывающих бабезиоз (пироплазмоз) во Франции и на Севере Африки. Наиболее вероятно, что сейчас эти паразиты известны как B. canis и B. rosi соответственно. До 1980 года никаких новых изменений в номенклатуру возбудителей бабезиозов внесено не было. Возбудители бабезиоза собак были переклассифицированы только с появлением молекулярных методов диагностики и молекулярного генотипирования. Последние исследования бабезиоза собак сосредоточены на определении таксономического статуса известных и недавно обнаруженных возбудителей бабезиоза, улучшении диагностических методов, раскрытии аспектов патофизиологии этого заболевания и поиск новых химиотерапевтических и иммуннопрофилактических протоколов.

Такой возбудитель бабезиоза собак как B. canis в 2000 году был повторно классифицирован в три подвида: B. canis canis, B. canis rossi и B. canis vogeli [2, 3]. В 2005 году на основании перекрестных иммунных реакций, серологического тестирования, векторной специфики и генетического родства эти паразиты признаны независимыми видами B. canis, B. rossi и B. vogeli. Все три паразита названы большими (крупными бабезиями, по ранее предложенной морфологической классификации) (табл. 1) [2, 3].
Четвертая крупная бабезия, паразитирующая на собаках, выделена в Северной Каролине (США) от собак с клиническими и гематологическими признаками бабезиоза. На сегодняшний день еще не классифицирована и определена как неклассифицированная крупная Babesia sp., изолят из Северной Каролины (табл. 1) [2].

Таблица 1

Виды бабезий (пироплазм), паразитирующие на собаках

Вид

Синоним

Вектор передачи

Географ.
распростран.

Большой бабезиоз (пироплазмоз)

Babesia vogeli

Babesia canis vogeli

Rhipicephalus sanguineus

Широкое распространение

Babesia canis

Babesia canis canis

Dermacentor spp.

Европа

Babesia rossi

Babesia canis rossi

Haemaphysalis elliptica

Районы Сахары, Африка

Babesia sp.

Неклассиф. Babesia sp.

Неизвестен

Северная Каролина, США

Малый бабезиоз (пироплазмоз)

Babesia gibsoni

Babesia gibsoni
Азиатск. штамм

Haemaphysalislongicornis,
собачьи бои

Азия, включая Японию

B. conradae

B. conradae

Ixodes hexagonus

Запад США

Theileria annae

Babesia microti-like

Ixodes hexagonus

Испания, Португалия
Spanish isolate

Theileria sp.

Неклассифиц. Theileria sp.

Неизвестен

Южная Африка

Theileria annulata

Неизвестен

Африка, Европа, Азия

Theileria equi

Babesia equi

Неизвестен

Африка, Европа, Азия

Большинство специалистов признают, по крайней мере, три возбудителя «малого» бабезиоза (пироплазмоза) у собак. Они отличаются по клиническим и генетическим характеристикам, это Babesia gibsoni, Babesia conradae. В другом исследовании бабезии (пироплазмы) были выделены от больных собак на западе США и описаны в оригинальном исследовании как B. gibsoni [3, 4] и Babesia microtilike, последняя позже идентифицирована как Theileriaannae [5, 6] (табл. 1).

Кроме того, имеются сообщения о выделении из крови собак, больных бабезиозом, три разновидности Theileria. У небольшого числа собак в Европе были выделены Theileria (Babesia) equi и Theileria annulata; и у 82 собак в Южной Африке была выделена неклассифицированная Theileriasp — Южно-Африканская Theileria sp. [5, 6].

При световой микроскопии интроэритроцитарные стадии Babesiaspp. неразличимый от Theileria spp.

Известно, что на кошках паразитирует Babesia felis и тейлерия Cytauxzoon felis, которые при световой микроспории имеют такие же характеристики, как и бабезии (пироплазмы) собак. Однако данных о том, что эти возбудители могут поражать собак, нет.
Как и при решении многих других вопросов, касающихся таксономии, не обошлось без разногласий при классификации бабезий (пироплазм) собак. Особенно это касается так называемых малых бабезий (пироплазм). Исторически роды Babesia и Theileria были разделены на основании стадий жизненного цикла и трансовариальной передачи в клещах. [2]. Противоречие заключается в том, должны ли Babesia spp. и Theileria spp. классифицироваться на основании их естественного цикла в организме собак и клещей, или могут использоваться генетические данные молекулярного анализа. С 2000 года при классификации бабезий (пироплазм) предпочтение отдают генетическим аспектам возбудителей. При молекулярных исследованиях в основном используют локус субъединицы рибосомального гена 18S РНК для родовых отличий бабезий (пироплазм), поскольку эта часть гена достаточно устойчива к мутациям. Но другие рРНК гены, например, цитохрома b и гены, кодирующие белки теплового шока, также использовались для родовой идентификации возбудителей бабезиоза[5, 8].

На сегодняшний день установлены зоны распространения бабезиоза собак, они перечислены в таблице 1; имеется всесторонняя и современная карта распространения клещевых инфекций собак Европы, Восточной и Юго-Восточная Азии [2]. Как и ожидалось, географическое распространение клещевых инфекций полностью связано с географическим распространением клещей-переносчиков этих заболеваний. Интересно отметить, что распространение Babesiagibsoni не связано с распространением каких-либо клещей, и быстрое глобальное распространение этого возбудителя связано с его уникальной возможностью прямой передачи от больной собаки к здоровой через укусы, минуя какие-либо клещевые векторы [9, 10].

На сегодняшний день Babesia vogeli является самой распространенной пироплазмой собак, что связано с широчайшим распространением вектора – коричневого собачьего клеща (Rhipicephalus sanguineus) (табл. 1). Babesia vogeli распространена повсеместно, в тропических и субтропических областях, а также в более прохладных широтах, где кроме Babesia vogeli распространена другая большая бабезия – Babesia canis. Такое распространение часто приводит к микст-инфекциям. Babesia canis передается Dermacentor spp. и имеет все более и более широкое распространение в центральной Европе, тогда как совсем недавно считалось, что ее распространение ограничено Францией [2].

Babesia rossi преимущественно распространена в Африке (вместе с B. vogeli и B. gibsoni). Первоначально этот агент был выделен только в Южной Африке, но на сегодняшний день есть сообщения о его выделении и в других регионах Африканского континента, включая Нигерию и Судан [2], где его распространяют клещи Haemaphysalisspp., являющиеся энзоотичными для этих мест (табл. 1).
Среди малых бабезий наибольшее географическое распространение получила B. gibsoni. Методом молекулярной идентификации она была обнаружена в южных, восточных и юго-восточных азиатских странах, получив наибольшее распространение там, где практикуются незаконные собачьи бои.

До сегодняшнего дня в Российской Федерации световая микроскопия остается единственным методом диагностики бабезиоза у собак. На основании световой микроскопии и общего анализа крови при пироплазмозе постоянно можно выявить анемию, моноцитоз, тромбоцитопению, повышенное СОЭ и, конечно, паразитемию. Бабезии (пироплазмы) могут определяться как внутри эритроцитов, так и свободно (рис. 1, 2), а также внутри макрофагов. Считается, здесь они оказываются в результате фагоцитоза пораженных эритроцитов. Такие макрофаги, нагруженные эритроцитами, также являются диагностическим критерием бабезиоза. Судить о тяжести течения по результатам световой микроскопии можно по степени паразитемии, анемии и моноцитоза, но без клинических параллелей эти данные имеют невысокую ценность. По литературным данным, предел чувствительности световой микроскопии приблизительно 0,001 % зараженных паразитами эритроцитов [2].

Во всем мире иммуноферментный анализ на протяжении последних 30 лет был самым распространенным тестом на бабезиоз (пироплазмоз) собак [7, 8]. Однако неудовлетворительная специфика из-за перекрестных реакций между Babesia spp. и другими микроорганизмами Apicomplexa, вносили субъективность в окончательные результаты исследования и мешали крупномасштабному применению этих методик. С 2000 года для диагностики бабезиоза начал активно внедряться метод ПЦР.

Методом ПЦР можно обнаружить паразитов при паразитемии 5 бабезий в 1 мкл крови [2]. Однако, несмотря на высокую чувствительность, ПЦР будет давать отрицательные результаты, если в пределах образца не окажется ни одного паразита. Как показывает практика, ложноотрицательные результаты могут отмечаться при хроническом бабезиозе и носительстве бабезий у бродячих животных. При проведении исследования на бабезиоз (пироплазмоз) у клинически здоровых собак необходимо учитывать эту особенность. Группой авторов была проверена чувствительность ПЦР [2 ,4] в комплексном исследовании у трех собак. При этом учитывались клинические параметры, гематологические исследования, серологический титр антител к бабезиям. Присутствие ДНК бабезий определялось методом ПЦР каждый день после экспериментального заражения. После полного клинического выздоровления, диагностированного по клиническим признакам, на фоне отсутствия увеличения селезёнки, нормальной геммограммы и отсутствия бабезий при световой микроскопии на 50 день после пика паразитемии в крови этих собак была обнаружена ДНК бабезий. Данное исследование показывает возможность обнаружения очень незначительного количества ДНК возбудителя методом ПЦР; данный эксперимент, возможно, моделирует ситуацию, сравнимую с хроническим бабезиозом.

Возможность ПЦР-диагностики в обнаружении ДНК бабезий (пироплазм) при хроническом течении заболевания можно улучшить, проверяя не один, а несколько образцов крови от подозреваемого животного [4, 5].

Тяжесть течения бабезиоза у собак и кошек колеблется от субклинической инфекции, при которой развивается невыраженная анемия, до очень тяжелого течения заболевания с развитием синдрома мультиорганного расстройства и быстрой гибели. Факторами, определяющими тяжесть течения, являются вид пироплазмы, вызвавшей заболевание, порода собаки, а также особенности физиологического состояния животного, такие как возраст, иммунный статус, наличие микст- инфекций, а также преморбидное состояние животного. Все виды бабезий (пироплазм) могут вызвать лихорадку, анорексию, спленомегалию, анемию и тромбоцитопению в результате прямого повреждения и разрушения эритроцитов хозяина (гемолиз), снижения осмотической резистентности зараженных эритроцитов.

Клинические особенности бабезиоза были рассмотрены с разных сторон [1, 2, 3]. При длительном наблюдении выявлено, что из всех больших бабезий Babesia vogeli является наименее патогенной, по крайней мере, у взрослых собак, и вызывает самые мягкие формы бабезиоза, часто развиваются хронические формы заболевания. А самой патогенной бабезией является Babesia rossi, выделенная в Африке [7].

 

У собак, зараженных Babesia rossi, часто развиваются различные осложнения. При этом такие как гепатопатия и иммунооблусловленный гемолиз утяжеляют течение заболевания, но не вызывают смерть, если должным образом проводится терапия. В то время как ДВС-синдром, энцефалиты, острая почечная недостаточность и отек легких требуют ранней и очень интенсивной терапии. При этом прогноз остается плохим [2, 7]. Напротив, бабезиоз (пироплазмоз), вызываемый Babesia vogeli, часто протекает субклинически, но у щенков в возрасте до 3-4 месяцев заболевание может быть фатальным (рис. 1-5).

Кроме того, бабезиоз (пироплазмоз), вызываемый Babesia vogeli, тяжело протекает у собак с иммунодепрессией, получающих химиотерапию по поводу онкологических заболеваний, после хирургических вмешательств, особенно после спленэктомии.

Тяжесть течения бабезиоза (пироплазмоза), вызванного Babesia canis, Babesia gibsoni, Theileria annae и Babesia conradae, колеблется от умеренного до тяжелого, но может наблюдаться широкий диапазон тяжести клинического состояния и осложнений в зависимости от индивидуальных особенностей животного (рис. 6) [2, 6, 7].

Babesia conradae, как считают многие исследователи, более патогенна, чем B. gibsoni, приводит к более высокой паразитемии и выраженной анемии [8]. В Испании инфекция, вызванная Theileria annae, была связана с выраженным гемолизом и азотемией [2, 5]. Неклассифицированная Babesia sp. в Северной Каролине была связана с неопределенными клиническими признаками, такими как летаргия, анорексия, пигментурия и умеренная лихорадка. Данные признаки были более выражены у спленэктомированных собак [3]. Результаты лабораторных исследований отражали умеренную анемию и выраженную тромбоцитопению, которую до этого наблюдали при инфекции, вызванной Babesia vogeli [3]. Были проведены гистологические исследования, которые показали, что данные пироплазмы способны вызывать гипоксическое повреждение почек (гипоксическая и гемоглобинурическая нефропатия) в виде тубулярных изменений, и гломерулонефрит по различным механизмам [8, 9].

Клинико-патoлогическое исследование собак, пораженных Theileriaannae на Северо-Западе Испании, показало, что у 36% собак (n = 58) отмечалась азотемия; у этих животных смертность была в 10 раз выше, чем у собак без азотемии. [5]. К сожалению, в этих исследованиях не приведены данные, показывающие корреляцию тяжести заболевания с выраженностью азотемии, но высокий белок в моче, повышенный креатинин, гипоальбуминемия и гиперхолестеринемия у больных собак заставила авторов предположить, что наиболее вероятной причиной поражения почек у собак при инфекции Theileria annae является гломерулонефрит [5]. Вместе с тем исследования уровня азотемии у собак, зараженных B. rossi, показали, что уровень креатинина и мочевины не являлся прогностическим показателем возникновения острой почечной недостаточности с плохим прогнозом [11, 12]. В недавних исследованиях эндокринных маркеров болезни установлено, что отмечается корреляция между высокой смертностью собак, больных бабезиозом, вызванным B. rossi, и высоким уровнем кортизола и АКТГ, при одновременно низком уровне T4 [13].

До сегодняшнего дня нет ясности в клинических последствиях носительства и хронического течения бабезиоза. Имеются данные как о тяжелом прогнозе для животных с таким течением бабезиоза, так и о полном выздоровлении. Имеются сообщения о том, что у большинства собак после незначительных клинических проявлений заболевания развивается преиммунное состояние, которое может закончиться иммуннообусловленными осложнениями или развитием клинического заболевания в более позднее время. Вместе с тем хроническая инвазия может вообще не иметь никаких последствий для собак, а в неблагополучных районах — даже приводить к устойчивости животных к пироплазмозу [2].

Имидокарба дипропионат и диминазин ацетурат являются широко используемыми антипироплазменными препаратами. Но в течение многих лет использовались и другие препараты с различным терапевтическим эффектом, например, такие как квинурониума сульфат, трипан синий, пентамидин, фенамидин, парваквон. В разных странах регистрационные комитеты ограничили применение многих из этих препаратов, так как некоторые (особенно диамидин – производное диминазина) ассоциированы с высокой токсичностью и многими побочными эффектами. В лучшем случае эти препараты приводили к улучшению клинических признаков и редко — к элиминации возбудителя из организма собаки [2].

Хорошие результаты получены при лечении бабезиоза, вызванного «мелкими» пироплазмами, особенно B. gibsoni, при применении клиндамицина в дозе 25 мг/кг каждые 12 часов. Данный препарат уменьшал паразитемию, при этом улучшались морфологические показатели крови в экспериментальном исследовании с заражением собак. Но препарат не удалял бабезий (пироплазм) из организма, и паразитемия наблюдалась еще на 108 день после обработки [14, 15].

Сообщается об экспериментальном заражении и последующей терапии 4 собак. Исследователи добились излечения собак, зараженных B. gibsoni, по следующему протоколу: диминазин в комбинации с клиндамицином и метронидазолом (15 мг/кг каждые 12 часов) и доксициклином (5 мг/кг каждые 12 часов) [14]. Успешным оказалась терапия этих собак также по следующему протоколу: азитромицин (10 мг/кг каждые 12 часов) и atovaquone (13.3 мг/кг каждые 8 часов) в течение 10 дней.

Эффективность лечения определялась по нормализации клинических признаков и отсутствию ДНК B. gibsoni в периферической крови, определяемой методом ПЦР. Десятидневный курс лечения заболевания, вызванного B. gibsoni, сопровождался клинической эффективностью и отсутствием побочных эффектов. Вместе с тем цена на atovaquone ограничивает применение этого препарата, особенно там, где он больше всего нужен, — в азиатских странах. Более дешевые формы atovaquone с proguanil вызывают тяжелые побочные эффекты со стороны ЖКТ у собак (доступность данных препаратов в РФ ограничена).

К сожалению, эта комбинация препаратов также не приводит к выздоровлению у некоторых собак, при этом быстро возникает устойчивость к atovaquone, вызванная мутацией гена b-цитохрома [14, 15].

Профилактировать бабезиоз (пироплазмоз), как и любое другое векторное заболевание, проще всего, не допуская нападения клещей на собак, но достичь этого практически невозможно, особенно в эндемичных районах, несмотря на широкое применение репеллентных спреев и ошейников [16].

Несколько препаратов были исследованы с целью их профилактического применения против бабезий, и ни один не дал надежных результатов. В Европе наиболее часто применяется однократная доза имидокарба (имидокарба дипропионат) в дозе 6 мг/кг, которая защищает собак от B. canis до 8 недель, его действие усиливается при одновременном применении доксициклина в дозе 5 мг/кг в день, особенно против высокопатогенных B. canis. [16].

Все данные по распространению различных видов бабезий получены из зарубежной литературы и касаются распространения бабезиоза за пределами Российской Федерации. Данные по распространению различных видов бабезий в России в доступной отечественной литературе мы не нашли.

Все данные по распространению различных видов бабезий получены из зарубежной литературы и касаются распространения бабезиоза за пределами Российской Федерации. Данные по распространению различных видов бабезий в России в доступной отечественной литературе мы не нашли, что и определило цель нашего исследования.

Цель исследования – установить наличие носительства бабезиоза у собак на территории Ростовской области, выяснить векторы передачи бабезиоза и виды бабезий, паразитирующих на собаках в данном регионе.

Материал и методы исследования. Исследования были проведены на 100 собаках, поступивших в клиники Ростовской области  в период с начала октября по конец ноября (2010 года).

Все собаки были клинически здоровы, и у них не ставился диагноз бабезиоз (пироплазмоз) за весь предшествующий весенне-летний период. У животных отбиралась и стабилизировалась EDTA кровь. Исследования на бабезиоз (пироплазмоз) проводили методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) с гибридизационно-флуоресцентной детекцией.

Анализ нуклеотидных полноразмерных геномов и участков различных генов бабезий, взятых из базы данных GenBank (NCBI) последовательностей, проводили с применением пакета прикладных программ «BioEdit 6.0». Исходя из нуклеотидного состава геномов бабезий разных видов,  нами были выбраны участки 18S рРНК-гена, наиболее консервативные среди известных изолятов. На консервативные участки были рассчитаны родоспецифические праймеры BabspF (5’-GTTGCTTCTTAGAGGGACTTTGG-3’) и BabspR (5’-GCTCTAAGCCCTGAGGAAGTTTAAG-3’), фланкирующие участок в 282 пары нуклеотидов (п.н.).

Для идентификации вида бабезий исследовалась кровь от собак на присутствие  видоспецифичных участков гена 18S рРНК. Исходя из диагностической ценности эксперимента для обнаружения кДНК конкретных видов бабезий, был выбран «стандартный» вариант ПЦР. С этой целью были сконструированы праймеры BrosF (5’-CTCACCAGGTCCAGACAAACG-3’) и BrosR (5’-GTAGGATTGACAGATTGATAGCTC-3’) к B. rossi, BcanF (5’-GATTCTTTGGGTGGTGGTGCATG-3’) и BcanR (5’-CGTTCTTAGTTGGTGGAGTGAT-3’) к B. canis и BvogF (5’-TGTCTGGTTAATTCCGTTAAC-3’) и BvogR (5’-GAACGAGACCTTAACCTGCTAACT-3’) к B. vogeli. Рассчитанные видоспецифичные праймеры для выявления кДНК имели высокую температуру отжига 62-64°С, это позволило объединить два этапа реакции (отжиг и элонгацию) в один. В результате удалось значительно снизить время постановки реакции, что не повлияло на её специфичность и чувствительность. Постановку ПЦР проводили в реакционной смеси стандартного состава с использованием 10 пкМ каждого праймера,  5 мкл раствора кДНК с добавлением 3 мM MgCl2.

Результаты исследования.
Нами были собраны клещи с территории Ростовской области с идентификацией их вида, результаты исследования занесены в таблицу 2.

Из таблицы видно, что наиболее ожидаемым видом бабезий, распространенным на территории Ростовской области, будет Babesia canis.

Таблица 2

Видовой состав иксодофауны Ростовской области

Виды иксодид

Количество особей

Виды бабезий, передаваемые клещами

Общее

Самцы

Самки

абс.

%

абс.

абс.

Dermacentor marginatus

3854

70,8

1348

2506

Babesia canis

Dermacentor pictus

1125

20,7

294

831

Babesia canis

Hyalomma scupense

86

1,6

44

42

Theileria sp.

Hyalomma detritum

75

1,4

31

44

нет данных

Rhipicephalus sanguineus

248

4,6

114

134

Babesia vogeli

Ixodes ricinus

53

0,9

28

25

Babesia canis

Из 100 собак, у которых была отобрана кровь на носительство бабезиоза, у 12 был получен положительный результаты в реакции ПЦР с гибридизационно-флуоресцентной детекцией (рис. 12). Таким образом, носительство бабезиоза в Ростовской области составило 12%. Наибольшее распространение бабезиоз (пироплазмоз) получил среди таких пород как немецкая овчарка, метисы и таксы, но, учитывая незначительное количество собак, возможно, эта тенденция отображает только высокую распространенность данных пород в Ростовской области. Чтобы точнее ответить на этот вопрос, потребуются дополнительные исследования.

Таблица 3

Распространение носительства бабезиоза по породам собак

Порода собаки

Номер исследования

Количество
животных

Процент, %

Немецкая овчарка

1, 56

2

16,7

Метис

7, 28

2

16,7

Такса

15,39

2

16,7

Ротвейлер

10

1

8,3

Курцхаар

29

1

8,3

Русский спаниель

35

1

8,3

Лабрадор

44

1

8,3

Питбультерьер

95

1

8,3

Не указано

33

1

8,3

Нами были проведены дальнейшие исследования материала, положительного на наличие родовых генов к бабезиям. Все 12 положительных материалов были дополнительно исследованы в реакции ПЦР для определения вида возбудителя.  Из 12 исследованных положительных материалов  клинически здоровых животных положительный тест на B. canis оказался у 9 животных, номера исследования – 1, 7, 15, 28,29, 33, 35, 44, 56. Что составило 9 % от числа всех исследованных животных и 75% — от числа всех носителей. В 4 случаях тест оказался положительным на B. vogeli, номера исследования – 1, 15, 33, 35, что составило 4 % от числа всех исследованных животных и 33,3 % — от числа всех носителей. На B. rossi все пробы оказались отрицательными. При этом, как видно из рис. 7 и цифровых значений исследования, все животные, зараженные B. vogeli, были заражены и B. canis. Таким образом, в Ростовской области широко распространена микст-инвазия B. vogeli и B. canis.

Вместе с тем пробы 10, 39, 95 оказались отрицательными на B. vogeli, B. canis и  B. rossi, что указывает, что в Ростовской области распространены не только эти бабезии  (пироплазмы), но и другие виды. Мы планируем продолжить исследование и в ближайшее время представить материал о распространении всех видов бабезий на территории Ростовской области.

Выводы. Таки образом, на сегодняшний день бабезиоз (пироплазмоз) собак остается важной клинической проблемой, несмотря на серьезные достижения последних лет в понимании патогенеза этого заболевания. Остаются нерешенными проблемы передачи инфекции и ее патофизиологический механизм, много нерешенных вопросов в диагностике заболевания и терапии этой инвазии, открытыми остаются вопросы профилактики данного заболевания.

В настоящее время  выделены неклассифицированные возбудители заболевания, не до конца выявлен ареал распространения, который, по всей видимости, будет продолжать расширяться из-за международного движения собак и расширения ареала клещей.

Носительство бабезиоза у собак в Ростовской области в конце периода передачи инвазии составляет 12 %, при этом инцидентность  носительства B. canis составляет 9 % от числа всех исследованных животных, или 75% — от числа носителей, микст-инвазия  B. canis и B. vogeli составила 4 % от числа всех исследованных животных, или 33,3 % — от числа всех носителей, в 25 % случаев идентифицировать вид бабезии  (пироплазмы) не удалось.

Необходимо напомнить, что, по данным зарубежных авторов, носительство может приводить к аутоиммунным анемиям, поражениям почек и развитию фатальной почечной недостаточности. Поставить диагноз методом световой микроскопии таким животным невозможно, и при обычном исследовании в ветеринарной клинике такие диагнозы проходят как криптогенные, а гибель животных связывают с другими причинами.

Литература

  1. Peter J Irwin, Canine babesiosis: from molecular taxonomy to control /4th International Canine Vector-Borne Disease Symposium Seville, Spain. 26–28 March 2009.
  2. Kjemtrup AM,Wainwright K, Miller M, Penzhorn BL, Carreno RA: Babesia conradae, sp. nov., a small canine Babesia identified in California. Vet Parasitol 2006, 138:103-111.
  3. Zahler M, Rinder H, Schein E, Gothe R: Detection of a new pathogenic  Babesia microti-like species in dogs. Vet Parasitol 2000, 89:241-248.
  4. Camacho AT, Pallas E, Gestal JJ, Guitiàn FJ, Olmeda AS, Goethert HK, Telford SR: Infection of dogs in north-west Spain with a Babesia microti-like agent. Vet Rec 2001, 149:552-555.
  5. Criado-Fornelio A, Martinez-Marcos A, Buling-Saraña A, Barba-Carretero JC: Molecular studies on  Babesia, Theileria  and Hepatozoon in southern Europe Part I: Epizootiological aspects. Vet Parasitol 2003, 113:189-201
  6. Matjila PT, Leisewitz AL, Ooshuizen MC, Jongejan F, Penzhorn B: Detection of a Theileria species in dogs in South Africa. Vet Parasitol 2008, 157:34-40.
  7. Yamasaki M, Inokuma H, Sugimoto C, Shaw S, Aktas M, Yabsley MJ, Yamato O, Maede Y: Comparison and phylogenetic analysis of the heat shock protein 70 gene of  Babesia  parasites from dogs. Vet Parasitol 2007, 145:217-227
  8. Birkenheuer AJ,Correa MT, Levy MG, Breitschwerdt EB:Geographic distribution of babesiosis among dogs in the United States and association with dog bites: 150 cases (2000-2003). J Am Vet Med Assoc 2005, 227:942-947.
  9. Jefferies R, Ryan UM, Jardine J, Broughton DK, Robertson ID, Irwin PJ: Blood, bull terriers and babesiosis: further evidence for direct transmission of Babesia gibsoni in dogs. Aust Vet  J 2007, 85:459-463.
  10. 57. Lobetti RG, Jacobsen LS: Renal involvement in dogs with babesiosis. J Sth Afr Vet Assoc 2001, 72: 23-28.
  11. de Scally MP, Lobetti RG, Reyers F, Humphris D: Are urea and creatinine values reliable indicators of azotaemia in canine babesiosis? J Sth Afr Vet Assoc 2004, 75:121-124.
  12. Schoeman JP, Rees P, Herrtage ME: Endocrine predictors of mortality in canine babesiosis caused by Babesia canis rossi. Vet Parasitol 2007, 148:75-82.
  13. Wulansari R,Wijaya A,Ano H, Horii Y, Nasu T,Yamane S, Makimura S: Clindamycin in the treatment of Babesia gibsoni infections in dogs. J Am Anim Hosp Assoc 2003, 39:558-562.
  14. Suzuki K,Wakabyashi H,Takahashi M, Fukushima K,Yabuki A, Endo Y: A possible treatment strategy and clinical factors to estimate the treatment response in Babesia gibsoni infection. J Vet Med Sci 2007, 69:563-568.
  15. Vercammen F, de Deken R, Maes L: Prophylactic treatment of experimental canine babesiosis (Babesia canis) with doxycycline. Vet Parasitol 1996, 66:251-255.

доктор биологических наук, профессор Карташов С.Н.,
кандидат ветеринарных наук Ключников А.Г.

  • Алексей Анурьев: Ни разу раньше не сталкивались с последствиями укусов клеща, вытаскивали ниткой, раздавил и присет. Теперь от собаководов всякие ужасы слышал, даже о летальных исходах. Осматривали конечно, но пропускали. Осенью прошлой друг привез капли вектра 3 d, от всех насекомых. Попробовали обрабатываться, очень интересный результат. Комары только в лесу кусают, но правда дохнут сразу. Это когда прямо стая, но все же не как раньше) А остальных насекомых ни разу не находили. Вот сейчас опять тепло, надо обрабатывать.

Наши представительства

Контакты

г. Ростов-на-Дону
ул. Мадояна, 198/125
тел.: (863) 29-000-45
303-08-65,
8-903-406-70-27,
8-928-279-81-86
Режим работы:
Круглосуточно
Яндекс.Метрика
X